zui近看大家常提到支原体污染，就翻了翻书，做了些笔记，现在贴出来和大家分享：
支原体是一种大小介于细菌和病毒之间(zui小直径0．2um)并独立生活的微生物．约有1%可通过滤菌器。支原体无壁形态呈高度多形性．可为圆形 、丝状或梨形 。
支原体形态多变，在光境下不易看清内部结构 。电镜下观察支原体膜为三层结构．其有电干密度大的密集颗粒群或丝状的中心束。支原体多吸附或散在于细胞表面和细胞之间。横断面与细胞微绒毛相似 ，但微绒毛电子密度比支原体小 ，且无颗粒群
或束 。
支原体代谢需固醇类物质、部分种类需要、O 2或葡萄糖 ，每一种支原体都有自身持点。多数 支原体适合于偏碱条件下生存(PH7．6—8．0)，对酸耐受性差。对热比较敏感 ，对一般抗生素不敏感。
支原体污染细胞后．培养液可不发生混浊．多数情况下细胞病理变化轻微或不显著 ，细微变化也可由于传代 、换液而缓解．因此易被忽视。但个别严重者，可致细胞增殖缓慢．甚至从培养器皿脱落。
为确定有无支原体污染可做如下检酗 ：
①相差显微境检测：将细胞按种于事先放置于培养瓶内的盖玻片上，24h后取出，用相差油镜观察．支原体呈暗色微小颗粒位于细胞表面和细胞之间。
②荧光染色法：荧光染色用能与DNA特异性结合的荧光染料Hoechst 33258，可使支原体内含有的DNA 着色，染色后用荧光显微镜观察 。具体方法如下：首先将细胞接种盖玻片上，在细胞未长满前取出玻片，用不合酚红的Hanks液漂洗一下，用l ： 3醋酸甲酵固定10Min，然后用生理盐水漂洗．置于用生理盐水配浓度为50pg／ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1—2min．向细胞面滴加pH5．5磷酸缓冲液数滴，然后置荧光显微镜下观察 。镜下支原体为散在于细胞同围或附于细胞膜 表面的亮绿色小点 。
③电镜检查；用扫描电镜方法简便快速．也可以利用透射电镜。
④DNA分子条文检查或支原体培养等方法：检出率高．但方法较为复杂
支原体是一类缺乏壁的原核细胞型微生物，大小一般在0.3-0.5um之间，呈高度多形性 ，有球形 、杆形、丝状、分枝状等多种形态。它不同于细胞 ，也不同于病毒 。支原体用普通染色法不易着色，用姬姆萨染色很浅，革兰染色为阴性 。支原体可在鸡胚绒毛尿囊膜上或细胞培养中生长，营养要求比细菌高。
细胞培养（特别是传代细胞）被支原体污染是个世界性问题。在细胞培养中支原体感染发生率达到63% ，支原体感染发生后能改变细胞的DNA,RNA及蛋白表达 ，又不能通过可视法对其进行检测 ，而且 它对细胞的生长率影响较小，不易引起注意 。国内外研究表明 ，95％以上是以下四种支原体：口腔支原体（M.orale） 、支原体（M.arginini） 、猪鼻支原体（M.hyorhinis）和莱氏无胆甾原体（A.laidlawii） ，为牛源性。以上是zui常见的污染细胞培养的支原体菌群 ，但能够污染细胞的支原体种类是很多的，国外调查证明，大约有二十多种支原体能污染细胞 ，有的细胞株可以同时污染两种以上的支原体。
支原体污染的来源包括工作环境的污染、操作者本身的污染（一些支原体在人体是正常菌群）、培养基的污染、污染支原体的细胞造成的交叉污染 、实验器材带来的污染和用来制备细胞的原始组织或器官的污染。
组织细胞培养工作中 ，主要从以下几个方面来预防支原体的污染 ：控制环境污染；严格实验操作；细胞培养基和器材要保证无菌；在细胞培养基中加入适量的抗生素。支原体污染细胞后，特别是重要的细胞株 ，有必要清除支原体，常用方法有抗生素处理 、抗血清处理、抗生素加抗血清和补体联合处理。支原体zui突出的结构特征是没有壁，一般来讲，对作用于细胞壁生物合成的抗生素 ，如 -内酰胺类、等*不敏感；对多粘菌素（polymycin） 、 、磺胺药物普遍耐药 。对支原体zui有抑制活性及常用于支原体感染治疗的抗生素是四环素类、大环内酯类及一些；其他类抗生素如氨基糖苷类、对支原体有较小抑制作用，所以常不用来作为支原体感染的化学治疗剂。InvivoGen公司研究开发的新一代支原体抗生素M-Plasmocin能有效地杀灭支原体，不影响细胞本身的代谢 ，并且用M-Plasmocin处理过的培养细胞，不会重新感染支原体。